FOTOS DE LAS PLANTAS QUE NOS LLEVAMOS A CASA

TOMATE CHERRY

TOMATE MARMADE

PIMIENTO

TOMATE MARMADE

CALABAZA

LECHUGA

PEPINO

BESO DE SATÁN

GUINDILLA

CROMATOGRAFÍA

Materiales:
-Mortero
-Acelgas
-Arena
-Alcohol
-Embudo
-Placa de petri
-Papel secante
-Colador
-Acetona

-Tubo de ensayo

Técnica:

Machamos las acelgas con arena. Le echamos alcohol para disolverlo. Filtramos en un colador para quitar los trozos de la disolución. Y lo filtramos ahora en un embudo con papel secante en un tubo de ensayo. Después echamos la solución en una placa de petri y ponemos un papel y una tiza para hacer la cromatografía. Ahora hacemos una cromatografía en líquidos y echamos la disolución alcohólica en un tubo de ensayo y echamos 3ml de acetona ,los movemos y esperamos al resultado.

Resultado:

En la cromatografía líquida nos ha dado que no eran omiscibles. En las cromatografías de la tiza y el papel hemos conseguido separar los pigmentos. Hemos observado una franja de carotenos, clorofila a y clorofila b.

Conclusión:

La acetona con la disolución alcohólica no es omiscible. Y en las cartografías hemos observado la separación de los pigmentos menos el de la xantofila.

Cromatografías en papel y tiza.

En la gradilla el tubo de ensayo con la acetona y
la disolución alcohólica.
En el mortero acelgas con arena y un poco de alcohol.

Proceso de filtrado.

Cromatografía en papel. Rasultados:
Caroteno
Clorofila a
Clorofila b

Resultado que deberíamos haber obtenido.

ACIDIFICACIÓN

Materiales:

-HCl a 0.2 molar

-Agua

-Planta de tomate cherry

-Pulverizador

Técnica:

Mezclamos 1L de agua con 3 mL  de HCl a 0.2 molar. El primer día el experimento lo regamos con agua y experimento al 1, 2 y 3 les pulverizamos HCl. El segundo día regamos con agua el experimento control y el experimento 3, y pulverizamos HCl el experimento 1 y 2. Y por último regamos con agua el experimento control y los experimento 2 y 3, y pulverizamos HCl en el experimento 1.

Resultado:
Las plantas se han estropeado debido al HCl, excepto las del experimento control.

Conclusión:
Como esperábamos, las plantas del experimento control han sobrevivido perfectamente, y los experimentos 1,2,3 se han estropeado, las del experimento 3 y 2 menos que las del experimento 1.

Estas son las plantas del experimento conrol.

estas son las plantas de los tres experimento.

CULTIVO DE MICROORGANISMOS

Materiales:
-Placa de petri
-Medios de cultivo: Agar-agar
-Estufa de cultivos
-Mechero de alcohol
-Asa de siembra
-Cultivo ya realizado

Técnica:
De un cultivo ya realizado cogimos unas muestras. Calentamos el asa de siembra con el mechero para esterilizarlo, tocamos el agar-agar para que no estropee las colonias del cultivo y pasamos el asa por encima del cultivo. Después el asa los pasamos por la placa de petri con el agar-agar y lo metemos en la estufa de cultivos, junto a un cultivo en el cual dejamos una placa de petri abierta para ver los organismos que había en el aire, otro en el que una persona ponía las puntas de los dedos en el agar-agar para ver los organismos que tenemos en nuestras manos y otro en el que echamos agua de una charca de nuestro instituto.

Resultado:
Obtuvimos algunas colonias que se podían observar perfectamente y otras que no debido a que apretamos demasiado en el agar-agar con el asa.

Conclusión:
Los cultivo de organismos que realizamos algunos salieron sin ningún problema y otros no se producieron.

Asa de siembra y mechero de alcohol.

Cultivo ya realizado.

Cultivo al que le echamos el agua de la charca.

Cultivo al cual pusimos las puntas de los dedos.

Cultivo en el cual escribimos el nombre de Oscar.

MITOSIS EN LA RAÍZ DE LA CEBOLLA

Materiales:
-Microscopio
-Porta
-Cubre
-Lanceta estéril
-Cubeta de tinción
-Aguja enmangada
-Mechero de alcohol
-Tijeras
-Papel de filtro
-Vidrio de reloj
-Pinza
-Orceina A y B
-Cebolla

Técnica:
Cortar dos trozos de 1cm de raíz de la cebolla. Se coloca en el vidrio de reloj con unas gotas de Orceina A y se calienta 8 minutos. Limpiamos las reices en agua y las ponemos en el papel secante. Las ponemos en el porta y le echamos Orceina B. Esperamos 1 minuto y lavamos el porta. Le ponemos el cubre y aplastamos bien la raíz. Observamos al microscopio.

Resultado:
Si las células las hemos teñido bien podremos observar la mitosis de estas mismas.

Conclusión:
Conseguimos observar la mitosis en una célula.

Mitosis

Células

Células

POLISACÁRIDOS DEL ALMIDÓN

Materiales:
-Tubo de ensayo
-Gradilla
-Mechero de alcohol
-Pinzas
-Pipetas con pipeteador automático
-Solución al 5% de almidón
-Solución de Lugol

Técnica:
Echamos en un tubo de ensayo 3ml de almidón y se añadimos 3 gotas de la solución de Lugol. Calentamos la mezcla en el mechero sin que llegue a hervir. Esperamos hasta que cambie de color y lo dejamos enfriar. Observamos los resultados.

Resultados:
El almidón no cambió de color, por lo tanto es negativo.

Conclusión:
En este experimento obtuvimos los resultados esperados.

HIDRÓLISIS DE LA SACAROSA

Materiales:
-Tubo de ensayo
-Gradilla
-Mechero de alcohol
-Pinzas
-Pipetas con pipeteador automático
-Solución al 5% de sacarosa.
-Ácido clorhídrico (HCl)
-Solución alcalina
-Reactivos de Fehling A y B

Técnica:
Echamos en un tubo de ensayo 3ml de sacarosa y se añaden 10 gotas de HCl diluido. La mezcla se calienta en el mechero durante 5 minutos. Se deja enfriar unos segundos y se neutraliza la mezcla añadiendo ·ml de solución alcalina. Por último realizamos la prueba con los reactivos de Fehling A y B (explicada en la entrada anterior de "El reconocimiento de los glúcidos") y observamos si tras la hidrólisis la sacarosa sigue dando negativo (no es reductor) o en este caso dará positivo (es reductor).

Resultado:
En este caso, después de la hidrólisis, la sacarosa ha dado positivo es decir, es reductor.

Conclusión:
En este experimento obtuvimos los resultados esperados, ya que cuando rompes las moléculas de la sacarosa, esta es reductora.

EXTRACCIÓN DE ADN

Materiales:
-Riñón
-Arena
-Mortero
-Tubo de ensayo
-Gradilla
-Disolución tampón (sal, agua, bicarbonato, detergente)
-Embudo
-Colador
-Alcohol etílico

Técnica:
Cogemos un riñón de un animal y lo machamos con arena hasta que quede una papilla. Echamos la disolución tampón y lo mezclamos. Echamos esta mezcla en el colador para quitar las vísceras que todavía quedan sin machacar y el liquido lo dejamos caer en un embudo puesto en un tubo de ensayo, solo 5ml. Esto lo mezclamos con 5ml de alcohol etílico y observamos lo que ocurre.

Resultado:
Observamos que la solución del riñón queda abajo y el alcohol etílico arriba. De la solución del riñón comienza a subir el ADN hacia arriba. 

Conclusión:
en este experimento los resultados obtenidos fueron los esperados, el ADN ascendió sin problema. 

Los trocitos que hay arriba de la solución es el ADN. 

RECONOCIMIENTO DE PRÓTIDOS 2

Materiales:
-Dos tubos de ensayo
-Gradilla
-Pipetas con pipeteador automático
-Solución de albúmina al 2%
-Sulfato de Cobre (SO4Cu) al 1%
-Hidróxido de Sodio (NaOH) al 20%
-Agua

Técnica:
Primero realizamos un experimento control en el que en un tubo de ensayo echamos 3ml de agua, 5 gotas de SO4Cu y 3ml de NaOH y lo mezclamos enérgicamente. Y en el experimento de verdad echamos en un tubo de ensayo 3ml de albúmina, 5 gotas de SO4Cu y 3ml de NaOH y lo agitamos enérgicamente. Observamos los resultados.

Resultado:
El experimento control dio negativo y en el que usamos albumina dio positivo.

Conclusión:
Este experimento podemos decir que está correcto porque el esperimento control asegura el resultado del de albumina.

Experimento control (izquierda)
Experimento con albúmina (derecha)

RECONOCIMIENTO DE PRÓTIDOS 1

Materiales:
-Tres tubos de ensayo
-Gradilla
-Pipetas con pipeteador automático
-Base soporte
-Nuez
-Aro metálico
-Rejilla metálica
-Mechero Bunsen
-Vaso de precipitados
-Ácido clorhídrico (HCl)
-Alcohol etílico

Técnica:
Echamos en los tres tubos de ensayo 3ml de leche. Uno de los tubos de ensayo lo ponemos al baño maría 20 o 30 minutos, en otro de los tubos de ensayos echamos 3ml de HCl concentrado, y en el tercero 3ml de alcohol etílico. Agitamos los dos últimos y observamos los resultados de todos.

Resultado:
La leche que pusimos al baño maría y la otra que pusimos con alcohol etílico no coagularon, pero con HCl la leche si que coaguló.

Conclusión:
Haber obtenido estos resultados de coagulación significa que hemos conseguido desnaturalizar las proteínas.

La leche que pusimos al baño maría.

Leche con alcohol etílico (izquierda)
Leche con HCl (derecha)

LÍPIDOS

Saponificación

Materiales:
-Un tubo de ensayo
-Gradilla
-Pipetas con pipeteador automático
-Mechero Bunsen con bombona
-Base soporte
-Nuez
-Aro metálico
-Rejilla de metal
-Vaso de precipitados
-Aceite
-Hidróxido sódico (NaOH)

Técnica:
Echamos en un tubo de ensayo 2 ml de aceite y 2ml de NaOH. Lo agitamos unos segundos y lo ponemos al baño maría durante 20 o 30 minutos. Pasado este tiempo observamos los resultados.

Resultados:
Observamos que tras el tiempo requerido se había formado jabón en el tubo de ensayo y debajo de este hay aceite.

Conclusión:
Obtuvimos los resultados esperados aunque no se diferencian muy bien los tres niveles de aceite, jabón y agua.


Nivel superior: solución aceitosa
Nivel intermedio: jabón
Nivel inferior: solución acuosa

Tinción

Materiales:
-Dos tubos de ensayo
-Gradilla
-Pipetas con pipeteador automático-Aceite
-Tinta china
-Sudán

Técnica:
Echamos en un tuno de ensayo 2ml de aceite y 2ml de tinta china y en otro 2ml de aceite y 2ml de sudán. Después agitamos enérgicamente los dos tubos de ensayo y observamos los resultados.

Resultados:
El aceite con la tinta china no consigue teñirse pero con el sudán sí.

Conclusión:
En este experimento también obtuvimos los resultados esperados aunque era un poco complicado observar si el aceite se había teñirse con la tinta china.

Aceite con sudán(5b o izquierda)
Aceite con tinta china (5c o derecha)

Solubilidad

Materiales:
-Dos tubos de ensayo
-Gradilla
-Pipetas con pipeteador automático-Aceite
-Agua
-Acetona

Técnica:
Echamos en un tubo de ensayo 2ml de aceite con 2ml de agua y en otro tubo de ensayo 2ml de aceite con 2ml de acetona. Lo agitamos enérgicamente y observamos los resultados.

Resultados:
El agua y el aceite no consiguen disolverse, en cambio el aceite con la acetona sí.

Conclusión:
En este experimento también obtuvimos los resultados esperados.



Aceite con agua (izquierda)
Aceite con acetona (derecha)

 
  

 

 

RECONOCIMIENTO DE LOS GLÚCIDOS

Materiales:
-Gradilla
-10 tubos de ensayo
-Pinza
-Mechero de alcohol
-Pipeta de 2ml
-Pipeta de 10ml
-Pipeteador automático
-Soluciones al 5% de glucosa, almidón, fructosa, lactosa, sacarosa
-Reactivos de Felhing A y B

Técnica:
Cogemos con la pipeta 3ml del glúcido que corresponda, lo mezclamos con 1ml de cada uno de los reactivos (Fehling A y B), se agita un poco para mezclarlo bien, lo calentamos en el mechero de alcohol y observamos de que color se vuelve la mezcla, si se vuelve de color rojo el glúcido es reductor y si se vuelve de color verde no es reductor.

Resultados:
-Glucosa: Es reductor
-Almidón: No es reductor
-Fructosa: Es reductor
-Lactosa: Es reductor
-Sacarosa: No es reductor

Conclusión:
En este experimento con la glucosa, el almidón, la fructosa y la lactosa obtuvimos los resultados esperados, pero con la sacarosa no, porque nos salió que era reductor, así que lo volvimos a hacer de nuevo sin mezclar las pipetas y nos salió que no era reductor.

Glucosa tras el experimento.



Almidón tras el experimento. 



Fructosa(izquierda), lactosa(medio), sacarosa(derecha).
La sacarosa dio negativo en un experimento en el que no mezclamos las pipetas. 

EL BESO DE SATÁN

Materiales:
-9 macetas
-Tierra
-40 semillas de El beso de satán
-Bandeja
-Regadera
 -Regla

Técnica:
Cogemos las 9 macetas y las llenamos de tierra. Hacemos 5 agujeros en la tierra de cada maceta y metemos una semilla en cada agujero. Tapamos los agujero con la tierra del alrededor. Por último regamos las plantas hasta que sean lo suficientemente grandes para trasplantarlas. 

Resultado:

Plantación 11-4-14	1ª maceta con 5 semillas	2ª maceta con 5 semillas	3ª maceta con 5 semillas	4ª maceta con 5 semillas	5ª maceta con 5 semillas	6ª maceta con 5 semillas	7ª maceta con 5 semillas	8ª maceta con 5 semillas	9ª maceta con 5 semillas
Germinación 22-4-14	1)2.4cm	1)2.5cm
Medición 29-4-14	1)2.5cm 2) 2cm	1)2.8cm 2)3cm	1) 1cm 2) 2.5cm	1)2.7cm 2)2.5cm	1)2cm 2)1.5cm	1)2cm 2)2.3cm 3)2.3cm	1)2cm	1)1.5cm 2)2.3cm 3)2.5cm 4)2.5cm 5)2.8cm	1)3cm 2)2cm 3)1.5cm
Medición 2-5-14	1)2.5cm 2)2.1cm 3)2cm	1)2.8cm 2)3cm	1)1.5cm 2)2.5cm	1)2.2cm 2)3.4cm 3)1cm	1)2.5cm 2)2.9cm	1)2.5cm 2)3cm 3)3cm	1)2.5cm	1)2.6cm 2)2.5cm 3)2.5cm 4)1.5cm 5)X	1)2cm 2)1cm 3)3cm
Medición  6-5-14	1)2cm 2)2.5cm 3)3cm	1)2.8cm 2)3.5cm	1)3.5cm 2)2.5cm	1)3.4cm 2)3cm 3)1.5cm	1)2.5cm 2)3cm	1)2.5cm 2)3cm 3)3cm	1)2.6cm	1)3cm 2)3.2cm 3)2.5cm 4)2cm 5)X	1)3cm 2)2cm 3)4cm
Medición 9-5-14	1)2.4cm 2)2.7cm 3)3cm	1)3cm 2)3.5cm	1)3.5cm 2)3cm	1)3.5cm 2)3.2cm 3)2cm	1)2.5cm 2)3cm	1)2.5cm 2)3cm 3)3cm	1)2.6cm	1)3.2cm 2)3cm 3)2cm 4)2.5cm 5)X	1)3cm 2)2cm 3)4cm
Medición 13-5-14	1)2.5cm 2)3cm 3)3cm	1)2.5cm 2)2.8cm	1)2cm 2)3cm	1)3cm 2)2.5cm 3)1cm	1)2.5cm 2)3cm	1)3cm 2)2.5cm 3)2.5cm	1)2.7cm	1)2.5cm 2)2.5cm 3)2cm 4)1.5cm 5)X	1)2.5cm 2)2cm 3)2.5cm 4)2.7cm

Conclusión:
Las plantas están creciendo correctamente.